Этот пример показывает, как изучить варианты номера копии DNA путем предварительной обработки и анализа данных из массива Affymetrix® GeneChip® Human Mapping 100k.
Вариант номера копии (CNV) задан как хромосомный сегмент, который составляет 1 КБ или больше в длине, номер копии которой отличается по сравнению со ссылочным геномом. CNV является одним из признаков генетической нестабильности, характерной для большинства человеческих случаев рака. При изучении раковых образований важная цель состоит в том, чтобы быстро и точно идентифицировать усиления номера копии и удаления, и оценить их частоты в уровень генома. Недавно, массивы одного полиморфизма нуклеотида (SNP) использовались, чтобы обнаружить и определить количество изменений номера копии всего генома с высоким разрешением. Подходы SNP массивов также предоставляют информацию о генотипе. Например, они могут показать потерю гетерозиготности (LOH), которая может представить свидетельства поддержки для присутствия удаления.
Affymetrix GeneChip, Сопоставляющий Набор Массивов, является популярной платформой для генотипирования SNP высокой пропускной способности и обнаружения CNV. В этом примере мы используем общедоступный набор данных от массива SNP Affymetrix 100K, который опрашивает более чем 100 000 сайтов SNP. Вы импортируете и предварительно обработаете тестовые данные об уровне, оцените необработанные отношения сигнала выборок по сравнению со ссылками, и затем выведете числа копии в каждом местоположении SNP после сегментации.
Чжао и др. изучил изменения номера копии всего генома человеческих клеточных линий карциномы легкого и первичных опухолей [1]. Выборки были гибридизированы к массивам SNP Affymetrix 100K, каждый содержащий 115 593 сопоставленных мест SNP. В данном примере вы будете анализировать данные из 24 выборок маленькой карциномы легкого ячейки (SCLC), которых 19 были первичные выборки опухоли, и 5 были выборки клеточной линии.
Для каждой выборки SNPs были геновведены с двумя различными массивами, Ранний доступ 50KXba и Ранний доступ 50KHind, параллельно. Короче говоря, два определенных количества выборок DNA были сначала переварены с ферментом ограничения XbaI или HindIII, соответственно. Переваренный DNA был лигирован к адаптеру перед последующим усилением цепной реакции полимеразы (PCR). Четыре реакции PCR были настроены для каждого XbaI или HindIII лигированная адаптером выборка DNA. Продукты PCR от этих четырех реакций были объединены, сконцентрированы и фрагментированы к области значений размера 250 - 2 000 BP. Фрагментированные продукты PCR были затем маркированы, денатурированы и гибридизированы к массивам.
В данном примере вы будете работать с данными из EA 50KXba массив. Чтобы анализировать данные из EA 50KHind массив только повторяют шаги. Данные массива SNP хранятся в файлах CEL с каждым файлом CEL, содержащим данные из одного массива.
Примечание: анализ микроданных массива SNP Высокой плотности требует расширенных объемов памяти от операционной системы; если вы получаете ошибки "Out of memory" при выполнении этого примера попытайтесь увеличить виртуальную память (или область подкачки) операционной системы или попытайтесь установить переключатель 3GB (только 32-битный Windows® XP). Эти методы описаны в этом документе.
Этот пример использует 50KXba и 50KHind наборы данных массива SNP (не включенный в тулбокс) из Лаборатории Мейерсона в Онкологическом институте Даны-Фарбера. Можно использовать любой другой набор данных, чтобы выполнить подобные исследования.
Файлами библиотеки CDF, используемыми для этих двух массивов, является CentXbaAv2.cdf и CentHindAv2.cdf. Можно получить эти файлы из веб-сайта Affymetrix.
Установите переменную Xba_celPath с путем к местоположению, вы сохранили массив Xba файлы CEL и переменная libPath с путем к местоположению файла библиотеки CDF для EA 50KXba массив SNP. (Эти файлы не распределяются с Bioinformatics Toolbox™).
Xba_celPath = 'C:\Examples\affysnpcnvdemo\Xba_array'; libPath = 'C:\Examples\affysnpcnvdemo\LibFiles';
SCLC_Sample_CEL.txt, файл, которому предоставляют программное обеспечение Bioinformatics Toolbox™, содержит список 24 имен файлов CEL, используемых для этого примера и выборок (5 клеточных линий SCLC и 19 первичных опухолей), которому они принадлежат. Загрузите эти данные в две переменные MATLAB®.
fid = fopen('SCLC_Sample_CEL.txt','r'); ftext = textscan(fid, '%q%q'); fclose(fid); samples = ftext{1}; cels = ftext{2}; nSample = numel(samples)
nSample =
24
Affymetrix 50KXba массив SNP имеет плотность до 50K сайтов SNP. Каждый SNP на массиве представлен набором тестовых четырехразрядных байтов. Тестовый четырехразрядный байт состоит из набора тестовых пар для обеих аллелей (A и B) и и для вперед и для противоположные скрутки (антисмысл и смысл) для SNP. Каждая тестовая пара состоит идеальная пара (PM), зонд и несоответствие (MM) зонд. Программное обеспечение Bioinformatics Toolbox обеспечивает функции, чтобы получить доступ к данным тестового уровня.
Функциональный affyread читает файлы CEL и файлы библиотеки CDF для массивов SNP Affymetrix.
Считайте шестой файл CEL EA 50KXba данные в структуру MATLAB.
s_cel = affyread(fullfile(Xba_celPath, [cels{6} '.CEL']))
s_cel =
struct with fields:
Name: 'S0168T.CEL'
DataPath: 'C:\Examples\affysnpcnvdemo\Xba_array'
LibPath: 'C:\Examples\affysnpcnvdemo\Xba_array'
FullPathName: 'C:\Examples\affysnpcnvdemo\Xba_array\S0168T.CEL'
ChipType: 'CentXbaAv2'
Date: '01-Feb-2013 11:54:13'
FileVersion: 3
Algorithm: 'Percentile'
AlgParams: 'Percentile:75;CellMargin:2;OutlierHigh:1.500;OutlierLow:1.004;AlgVersion:6.0;FixedCellSize:TRUE;FullFeatureWidth:5;FullFeatureHeight:5;IgnoreOutliersInShiftRows:FALSE;FeatureExtraction:TRUE;PoolWidthExtenstion:2;PoolHeightExtension:2;UseSubgrids:FALSE;RandomizePixels:FALSE;ErrorBasis:StdvMean;StdMult:1.000000'
NumAlgParams: 16
CellMargin: 2
Rows: 1600
Cols: 1600
NumMasked: 0
NumOutliers: 12478
NumProbes: 2560000
UpperLeftX: 222
UpperLeftY: 236
UpperRightX: 8410
UpperRightY: 219
LowerLeftX: 252
LowerLeftY: 8426
LowerRightX: 8440
LowerRightY: 8410
ProbeColumnNames: {8×1 cell}
Probes: [2560000×8 single]
Считайте файл библиотеки CDF для EA 50KXba массив в структуру MATLAB.
s_cdf = affyread(fullfile(libPath, 'CentXbaAv2.cdf'))
s_cdf =
struct with fields:
Name: 'CentXbaAv2.cdf'
ChipType: 'CentXbaAv2'
LibPath: 'C:\Examples\affysnpcnvdemo\LibFiles'
FullPathName: 'C:\Examples\affysnpcnvdemo\LibFiles\CentXbaAv2.cdf'
Date: '01-Feb-2013 11:54:12'
Rows: 1600
Cols: 1600
NumProbeSets: 63434
NumQCProbeSets: 9
ProbeSetColumnNames: {6×1 cell}
ProbeSets: [63443×1 struct]
Можно осмотреть общее качество массива путем просмотра данных об интенсивности тестового уровня с помощью функционального maimage.
maimage(s_cel)
Функция affysnpquartets составляет таблицу тестовых четырехразрядных байтов для SNP. На массивах SNP Affymetrix 100K тестовый четырехразрядный байт содержит 20 тестовых пар. Например, чтобы получить подробную информацию о тестовом наборе номер 6540, можно ввести следующие команды:
ps_id = 6540; ps_qt = affysnpquartets(s_cel, s_cdf, ps_id)
ps_qt =
struct with fields:
ProbeSet: '2685329'
AlleleA: 'A'
AlleleB: 'G'
Quartet: [1×6 struct]
Можно также просмотреть карту тепла интенсивности премьер-министра и пар зонда MM четырехразрядного байта зонда SNP с помощью функции probesetplot. Нажмите кнопку Insert Colorbar, чтобы показать цветовую шкалу карты тепла.
probesetplot(s_cel, s_cdf, ps_id, 'imageonly', true);
В этом представлении 20 тестовых пар упорядочены слева направо. Первые две строки (10 тестовых пар) соответствуют аллели A, и последние две строки (10 тестовых пар) соответствуют аллели B. Для каждой аллели левые 5 тестовых пар соответствуют скрутке смысла (-), в то время как правильные 5 тестовых пар соответствуют антисмыслу (+) скрутка.
Вы будете использовать функцию celintensityread, чтобы считать все 24 файла CEL. Функция celintensityread возвращает структуру, содержащую матрицы PM и MM (дополнительная) интенсивность для зондов и их чисел группы. В каждой тестовой матрице интенсивности индексы столбца соответствуют порядку, в котором были считаны файлы CEL, и каждая строка соответствует зонду. Для анализа номера копии (CN) только необходима интенсивность PM.
Импортируйте тестовые данные об интенсивности всего EA 50KXba массивы в структуру MATLAB.
XbaData = celintensityread(cels, 'CentXbaAv2.cdf',... 'celpath', Xba_celPath, 'cdfpath', libPath)
Reading CDF file: CentXbaAv2.cdf
Reading file 1 of 24: H524
Reading file 2 of 24: H526
Reading file 3 of 24: H1184
Reading file 4 of 24: H1607
Reading file 5 of 24: H1963
Reading file 6 of 24: S0168T
Reading file 7 of 24: S0169T
Reading file 8 of 24: S0170T
Reading file 9 of 24: S0171T
Reading file 10 of 24: S0172T
Reading file 11 of 24: S0173T
Reading file 12 of 24: S0177T
Reading file 13 of 24: S0185T
Reading file 14 of 24: S0187T
Reading file 15 of 24: S0188T
Reading file 16 of 24: S0189T
Reading file 17 of 24: S0190T
Reading file 18 of 24: S0191T
Reading file 19 of 24: S0192T
Reading file 20 of 24: S0193T
Reading file 21 of 24: S0194T
Reading file 22 of 24: S0196T
Reading file 23 of 24: S0198T
Reading file 24 of 24: S0199T
XbaData =
struct with fields:
CDFName: 'CentXbaAv2.cdf'
CELNames: {1×24 cell}
NumChips: 24
NumProbeSets: 63434
NumProbes: 1268480
ProbeSetIDs: {63434×1 cell}
ProbeIndices: [1268480×1 uint8]
GroupNumbers: [1268480×1 uint8]
PMIntensities: [1268480×24 single]
Affymetrix Ранний доступ к массивам совпадают с текущим коммерческим Отображением 100K массивы за исключением некоторых кашировавшие зонды. Данные, полученные из EA Affymetrix 100K массивы SNP, могут быть преобразованы в Отображение 100K массивы путем отфильтровывания отклоненных идентификаторов зонда SNP на Раннем доступе к массиву и преобразования идентификаторов SNP в Отображение 100K идентификаторы SNP. Идентификаторы SNP для EA 50KXba и 50KHind массивы и их соответствующие идентификаторы SNP при Отображении 50KXba и 50KHind массивы обеспечиваются в двух файлах MAT, поставленных с программным обеспечением Bioinformatics Toolbox, Mapping50K_Xba_V_EA и Mapping50K_Hind_V_EA, соответственно.
load Mapping50K_Xba_V_EA
Функция помощника affysnpemconvert преобразовывает данные в Отображение 50KXba данные.
XbaData = affysnpemconvert(XbaData, EA50K_Xba_SNPID, Mapping50K_Xba_SNPID)
XbaData =
struct with fields:
CDFName: 'CentXbaAv2.cdf'
CELNames: {1×24 cell}
NumChips: 24
NumProbeSets: 58960
NumProbes: 1179200
ProbeSetIDs: {58960×1 cell}
ProbeIndices: [1179200×1 uint8]
GroupNumbers: [1179200×1 uint8]
PMIntensities: [1179200×24 single]
Можно просмотреть графики плотности преобразованного в журнал распределения интенсивности PM через эти 24 выборки перед предварительной обработкой.
f=zeros(nSample, 100); xi = zeros(nSample, 100); for i = 1:nSample [f(i,:),xi(i,:)] = ksdensity(log2(XbaData.PMIntensities(:,i))); end
figure; plot(xi', f') xlabel('log2(PM)') ylabel('Density') title('Density Plot') hold on
Нормализация квантиля является особенно эффективной при нормализации нелинейности в данных, введенных экспериментальными смещениями. Выполните нормализацию квантиля с помощью функции quantilenorm.
XbaData.PMIntensities = quantilenorm(XbaData.PMIntensities);
Постройте получившееся распределение квантиля с помощью пунктирной красной кривой.
[f,xi] = ksdensity(log2(XbaData.PMIntensities(:,1))); plot(xi', f', '--r', 'Linewidth', 3) hold off
Примечание: можно также использовать RMA или процедуры GCRMA для фонового исправления. Процедура RMA оценивает фон моделью смеси, где фоновые сигналы приняты, чтобы быть нормально распределенными, и истинные сигналы экспоненциально распределяются, в то время как процесс GCRMA состоит из оптического фонового исправления и основанной на тестовой последовательности фоновой корректировки. Для получения дополнительной информации о том, как использовать RMA и процедуры GCRMA, смотрите Предварительную обработку Affymetrix® Microarray Data на Тестовом Уровне.
При помощи данных о поле GroupNumbers из структуры XbaData можно извлечь интенсивность для аллели A и аллели B для каждого зонда. Используйте функциональный affysnpintensitysplit, чтобы разделить тестовую матрицу интенсивности PMIntensities в две матрицы с одинарной точностью, PMAIntensities и PMBIntensities, для аллели A и аллели B зонды соответственно. Количество зондов в каждой матрице является максимальным количеством зондов для каждой аллели.
XbaData = affysnpintensitysplit(XbaData)
XbaData =
struct with fields:
CDFName: 'CentXbaAv2.cdf'
CELNames: {1×24 cell}
NumChips: 24
NumProbeSets: 58960
NumProbes: 589600
ProbeSetIDs: {58960×1 cell}
ProbeIndices: [589600×1 uint8]
PMAIntensities: [589600×24 single]
PMBIntensities: [589600×24 single]
Для общего анализа номера копии упрощение должно проигнорировать аллель A и аллель B последовательности и их информация о скрутке и, вместо этого, объединить интенсивность премьер-министра для аллели A и аллели B каждой тестовой пары.
PM_Xba = XbaData.PMAIntensities + XbaData.PMBIntensities;
Для конкретного SNP у нас теперь есть K (K=5 для Affymetrix, Сопоставляющего 100K массивы) добавленные сигналы, каждый сигнал, являющийся мерой того же самого - общий CN. Однако каждый из сигналов K имеет немного отличающиеся последовательности, таким образом, их эффективность гибридизации может отличаться. Можно использовать методы резюмирования RMA, чтобы подвести итог интенсивности зонда аллели для каждого набора зонда SNP.
PM_Xba = rmasummary(XbaData.ProbeIndices, PM_Xba);
Affymetrix обеспечивает отформатированные CSV файлы аннотации для их массивов SNP. Можно загрузить файлы аннотации для Отображения 100K массивы под эгидой http://www.affymetrix.com/support/technical/annotationfilesmain.affx.
В данном примере загрузите и разархивируйте файл аннотации для Отображения, 50KXba массив Mapping50K_Xba240.na29.annot.csv. Информация о зонде SNP Отображения 50KXba массив, может быть считан из этого файла аннотации. Установите переменную annoPath с путем к местоположению, где вы сохранили файл аннотации.
annoPath = 'C:\Examples\affysnpcnvdemo\AnnotFiles';
Функциональный affysnpannotread читает файл аннотации и возвращает структуру, содержащую информацию о хромосоме SNP, хромосомные положения, последовательности и информацию о длине фрагмента PCR, упорядоченную тестовыми идентификаторами набора от второй входной переменной.
annoFile = fullfile(annoPath, 'Mapping50K_Xba240.na29.annot.csv');
annot_Xba = affysnpannotread(annoFile, XbaData.ProbeSetIDs)
annot_Xba =
struct with fields:
ProbeSetIDs: {58960×1 cell}
Chromosome: [58960×1 int8]
ChromPosition: [58960×1 double]
Cytoband: {58960×1 cell}
Sequence: {58960×1 cell}
AlleleA: {58960×1 cell}
AlleleB: {58960×1 cell}
Accession: {58960×1 cell}
FragmentLength: [58960×1 double]
Относительный номер копии в SNP между двумя выборками оценивается на основе log2 отношения нормированных сигналов. Усредненные нормированные сигналы от нормальных выборок используются в качестве глобальной ссылки. Предварительно обработанное ссылочное среднее значение преобразованные в журнал сигналы для Отображения 50KXBa массив и 50KHind массив обеспечивается в MAT-файлах, SCLC_normal_Xba и SCLC_normal_Hind соответственно.
load SCLC_Normal_Xba
Оцените log2 отношение нормированных сигналов.
log2Ratio_Xba = bsxfun(@minus, PM_Xba, mean_normal_PM_Xba);
Зонды SNPs с недостающим номером хромосомы, геномным положением или длиной фрагмента в файле аннотации не имеют достаточной информации для далее анализа CN. Также для анализа CN, Y хромосомы обычно игнорируются. Отфильтруйте эти зонды SNP.
fidx = annot_Xba.Chromosome == -1 | annot_Xba.Chromosome == 24 |...
annot_Xba.ChromPosition == -1 | annot_Xba.FragmentLength == 0;
log2Ratio_Xba(fidx, :) = [];
chromosome_Xba = annot_Xba.Chromosome(~fidx);
genomepos_Xba = annot_Xba.ChromPosition(~fidx);
probesetids_Xba = XbaData.ProbeSetIDs(~fidx);
fragmentlen_Xba = annot_Xba.FragmentLength(~fidx);
accession_Xba = annot_Xba.Accession(~fidx);
Закажите оценку CN числами хромосом:
[chr_sort, sidx] = sort(chromosome_Xba); gpos_sort = genomepos_Xba(sidx); log2Ratio_sort = log2Ratio_Xba(sidx, :); probesetids_sort = probesetids_Xba(sidx); fragmentlen_sort = fragmentlen_Xba(sidx); accession_sort = accession_Xba(sidx);
Закажите оценку CN хромосомными геномными положениями:
u_chr = unique(chr_sort); gpsidx = zeros(length(gpos_sort),1); for i = 1:length(u_chr) uidx = find(chr_sort == u_chr(i)); gp_s = gpos_sort(uidx); [gp_ss, ssidx] = sort(gp_s); s_res = uidx(ssidx); gpsidx(uidx) = s_res; end
gpos_ssort = gpos_sort(gpsidx); log2Ratio_ssort = log2Ratio_sort(gpsidx, :); probesetids_ssort = probesetids_sort(gpsidx); fragmentlen_ssort = fragmentlen_sort(gpsidx); accession_ssort = accession_sort(gpsidx);
В анализе должны быть учтены систематические эффекты от процесса PCR. Например, более длинные фрагменты обычно приводят к меньшему количеству усиления PCR, которое приводит к меньшему количеству материала, чтобы гибридизировать и более слабые сигналы. Вы видите это путем графического вывода необработанной ЦНС с воздействием длины фрагмента.
figure; plot(fragmentlen_ssort, log2Ratio_ssort(:, 1), '.') hold on plot([0 2200], [0 0], '-.g') xlim([0 2200]) ylim([-5 5]) xlabel('Fragment Length') ylabel('log2(Ratio)') title('Pre PCR fragment length normalization')
Nannya и др., 2005 ввел устойчивую линейную модель, чтобы оценить и удалить этот эффект. В данном примере используйте функцию malowess для нормализации длины фрагмента PCR для демонстрационного 1. Затем отобразите сглаженную подходящую кривую.
smoothfit = malowess(fragmentlen_ssort,log2Ratio_ssort(:,1)); hold on plot(fragmentlen_ssort, smoothfit, 'r+') hold off
log2Ratio_norm = log2Ratio_ssort(:,1) - smoothfit;
Постройте нормированную необработанную оценку CN длины фрагмента PCR:
figure; plot(fragmentlen_ssort, log2Ratio_norm, '.'); hold on plot([0 2200], [0 0], '-.g') xlim([0 2200]) ylim([-5 5]) xlabel('Fragment Length') ylabel('log2(Ratio)') title('Post PCR fragment length normalization') hold off
Можно нормировать воздействие длины фрагмента PCR для всех выборок с помощью функции malowess.
Снова, можно повторить предыдущие шаги для 50KHind данные массива.
Загрузите MAT-файл, содержащий предварительно обработанные и нормированные данные CN и из 50KXba массивы и из 50KHind массивы.
load SCLC_CN_Data
Можно теперь построить профиль целого генома общей ЦНС. Например, постройте профиль целого генома для демонстрационного 1 (CL_H524) с помощью функции помощника plotcngenomeprofile.
plotcngenomeprofile(SCLC_CN.GenomicPosition,SCLC_CN.Log2Ratio(:, 1),...
SCLC_CN.Chromosome, 1:23, SCLC_CN.Sample{1})
Можно также построить каждую хромосому профиль CN в подграфике. Например, постройте каждую хромосому профиль CN для демонстрационных 12 (PT_0177T):
plotcngenomeprofile(SCLC_CN.GenomicPosition,SCLC_CN.Log2Ratio(:, 12),... SCLC_CN.Chromosome, 1:23, SCLC_CN.Sample{12}, 'S')
В Чжао и др., 2 005 исследованиях, высокоуровневое усиление наблюдалось в q12.2-q12.3 области на хромосоме 8 для выборок SCLS. Можно выполнить сегментацию CBS на хромосоме 8 для демонстрационного PT_S0177T.
sampleid = find(strcmpi(samples, 'PT_S0177T')); ps = cghcbs(SCLC_CN, 'sampleind', sampleid, 'chromosome', 8, 'showplot', 8)
Analyzing: PT_S0177T. Current chromosome 8
ps =
struct with fields:
Sample: 'PT_S0177T'
SegmentData: [1×1 struct]
Добавьте идеограмму для хромосомы 8 к графику:
chromosomeplot('hs_cytoBand.txt', 8, 'addtoplot', gca)
Выведите изменения номера копии:
segment_cn = ceil((2.^ps.SegmentData.Mean)*2); cnv = segment_cn(segment_cn ~= 2); startbp = ps.SegmentData.Start(segment_cn ~= 2) endbp = ps.SegmentData.End(segment_cn ~= 2) startMB = startbp/10^6; endMB = endbp/10^6;
startbp =
62089326
62182830
128769526
endbp =
62182830
62729651
129006828
Можно также получить cytoband информацию для CNVs. Функциональный cytobandread возвращает cytoband информацию в структуре.
ct = cytobandread('hs_cytoBand.txt')
ct =
struct with fields:
ChromLabels: {862×1 cell}
BandStartBPs: [862×1 int32]
BandEndBPs: [862×1 int32]
BandLabels: {862×1 cell}
GieStains: {862×1 cell}
Найдите метки cytoband для CNVs:
cn_cytobands = cell(length(cnv),1); for i = 1:length(cnv) istart = find(ct.BandStartBPs <= startbp(i) & ct.BandEndBPs >= startbp(i) & strcmp(ct.ChromLabels, '8')); iend = find(ct.BandStartBPs <= endbp(i) & ct.BandEndBPs >= endbp(i) & strcmpi(ct.ChromLabels, '8')); if strcmpi(ct.BandLabels{istart}, ct.BandLabels{iend}) cn_cytobands{i} = ['8' ct.BandLabels{istart}]; else cn_cytobands{i} = ['8' ct.BandLabels{istart} '-' '8' ct.BandLabels{iend}]; end end
Создайте отчет, отображающий положения запуска, конечные положения и размер CNVs.
report = sprintf('Cytobands \tStart(Mb)\tEnd(Mb)\t\tSize(Mb)\tCN\n'); for i = 1:length(cnv) report = sprintf('%s%-15s\t%3.2f\t\t%3.2f\t\t%3.2f\t\t%d\n',... report, cn_cytobands{i},startMB(i),endMB(i),endMB(i)-startMB(i),cnv(i)); end disp(report)
Cytobands Start(Mb) End(Mb) Size(Mb) CN 8q12.2 62.09 62.18 0.09 4 8q12.2-8q12.3 62.18 62.73 0.55 7 8q24.21 128.77 129.01 0.24 7
Среди трех областей усиления 8q12-13 область была подтверждена анализом межфазы FISH (Чжао и др., 2005).
Можно также визуализировать часть выборок с усилениями номера копии по крайней мере трех (красных) копий, и скопировать потери номера меньше чем для 1,5 (синих) копий через весь SNPs для всех выборок SCLS. Функциональный cghfreqplot отображает частоту изменений номера копии через несколько выборок. Чтобы лучше визуализировать данные, постройте только SNPs с усилением или частотой потерь более чем 25%.
gainThrd = log2(3/2); lossThrd = log2(1.5/2); cghfreqplot(SCLC_CN, 'Color', [1 0 0; 0 0 1],... 'Threshold', [gainThrd, lossThrd], 'cutoff', 0.25) title('SCLC Summary Plot')
[1] Чжао, X., и др., "Гомозиготные удаления и усиления хромосомы при человеческих карциномах легкого, показанных одним анализом полиморфизма нуклеотида массивов", Исследования рака, 65 (13):5561-70, 2005.
[2] Nannya, Y., и др., "Устойчивый алгоритм для обнаружения номера копии с помощью высокоплотного олигонуклеотида один массивы генотипирования полиморфизма нуклеотида", Исследования рака, 65 (14):6071-8, 2005.